这章有点没传上来，等一下。审核出问题了。
先随便传点东西顶一顶。
从黄精中单独提取黄酮类物质通常需要结合黄酮的理化性质（如极性、溶解性、酸碱性等）进行分离纯化。以下是具体步骤和注意事项：
---
1.原料预处理
·干燥与粉碎：将黄精根茎洗净后烘干（50-60避免高温破坏黄酮），粉碎成粗粉（40-60目），增大接触面积。
·脱脂（可选）：若样品脂肪含量高，可用石油醚或正己烷回流脱脂，避免干扰后续提取。
---
2.黄酮的初步提取
方法选择
·醇提法（常用）：
·溶剂：60-70%乙醇（黄酮苷类）或甲醇（苷元类）。
·条件：料液比1:10~1:15，60-70回流1-2小时，重复2-3次。
·优点：兼顾极性与非极性黄酮，适合大多数黄精黄酮（如芹菜素、木犀草素衍生物）。
·热水提取（针对黄酮苷）：
·80-90浸提，但可能溶出多糖等杂质，后续纯化压力大。
·超声/微波辅助：
·超声（40kHZ，30分钟）或微波（300，5分钟）可提高效率，缩短时间。
浓缩与初步除杂
·合并提取液，减压浓缩至无醇味，得浸膏。
·除多糖/蛋白质：
·加入3-4倍体积95%乙醇沉淀多糖，静置后离心取上清。
·或用Seva法（氯仿:正丁醇=4:1）去除蛋白质。
---
3.黄酮的纯化
液液萃取法
·用乙酸乙酯或正丁醇萃取水相中的黄酮（黄酮苷元更易溶于乙酸乙酯，苷类偏向正丁醇）。
·重复3-4次，合并有机相，减压浓缩。
柱层析法（关键步骤）
·吸附剂选择：
·聚酰胺柱：适合黄酮（氢键吸附），用30%-95%乙醇梯度洗脱（如先水洗去糖，再用50%乙醇洗黄酮）。
·硅胶柱：对黄酮苷元效果好，洗脱剂用氯仿-甲醇梯度（如10:1→5:1）。
·大孔树脂（如AB-8、D101）：先水洗去糖，再用30-70%乙醇洗脱黄酮。
·操作要点：
·上样量不超过柱体积的1/10，流速1-2BV/h。
·分段收集，通过TLC（硅胶G板，展开剂：乙酸乙酯-甲酸-水=8:1:1）或HPLC监测目标成分。
重结晶
·对纯度较高的部分，可用甲醇-水或乙醇-乙酸乙酯混合溶剂重结晶。
---
4.鉴定与验证
·显色反应：
·盐酸-镁粉反应（橙红色）、AlCl3反应（黄色荧光）初步确认黄酮。
·HPLC/MS：
·对照品比对（如芦丁、槲皮素等），或通过质谱分析分子量及结构。
·UV光谱：黄酮类在250-280nBandII）、330-380nBandI）有特征吸收。
---
注意事项
1.避免氧化：提取过程避光、氮气保护，尤其对含酚羟基的黄酮。
2.梯度优化：柱层析时需预试验确定最佳洗脱比例。
3.得率与纯度平衡：高纯度可能损失得率，需根据需求调整（如药用需≥95%）。
4.中试放大：若工业化生产，需优化溶剂回收、树脂再生等成本问题。
---
示例流程（简化版）
黄精粉→70%乙醇回流→浓缩→AB-8树脂（水洗→50%乙醇洗）→浓缩洗脱液→聚酰胺柱（水→30%乙醇）→冷冻干燥→黄酮组分（纯度可达80%以上）。
通过上述方法可高效分离黄精黄酮，后续可结合制备型HPLC或结晶进一步提高纯度。